細胞介導細胞毒試驗
細胞毒是細胞介導免疫的主要效應之一,是機體的一種免疫監(jiān)督機制,因此,細胞毒試驗(包括NK,ADCC,LAK,TIL,CTL等)是一項重要的免疫指標。傳統(tǒng)的同位素示蹤、染料排斥、熒光法等都有同位素污染、人為因素影響等缺點。FCM法綜合了上述常規(guī)法的優(yōu)點,越來越引起臨床醫(yī)學家的重視。
碘化丙啶(Propidium Iodide,PI)染料排斥法 利用PI可以滲透到死細胞內(nèi)使核染色的特點,用FCM分析死亡靶細胞比例。此方法還有一個51Cr釋放法不能比擬的長處,即不但可以測定單次細胞毒試驗(SCCA),也可以觀察NK細胞的再循環(huán)殺傷作用,即:效應細胞殺死一個靶細胞后,可再殺傷其他細胞的能力,稱之總細胞毒試驗(TCCA)。
FDA-FCM試驗 基本原理同PI排斥法,但它同前者相反,是以熒光染料FDA在活細胞內(nèi)滯留,以計算活細胞數(shù)為基礎(chǔ)。FDA可以穿通活的細胞膜進入胞內(nèi),受胞內(nèi)脂酶水解,產(chǎn)生熒光物質(zhì)留于胞內(nèi);細胞受殺傷時,染料排出,以確定殺傷效應。
細胞光掃描法 通過靶細胞受效應細胞殺傷后發(fā)生形態(tài)的改變及光掃描特性變化,在排除效應細胞群體后,用特設(shè)的閾值把死活的兩群靶細胞分開,計算殺傷效應。
也有學者用雙標記細胞毒法,即用綠熒光色素標記效應細胞,用紅色熒光素標記靶細胞,在細胞裂解前,用FCM定量測定效應細胞和靶細胞的結(jié)合體形成。